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Curso de Citrometría de flujo y separación celular. Aplicaciones en biología y biomedicina

UNIVERSIDAD DE MÁLAGA
UNIVERSIDAD DE MÁLAGA

Curso Presencial en Malaga (Málaga)

Precio: 550 €
Duración: 23 horas

Resumen del curso

Introducción teórica y práctica a la citometría de flujo y a la separación celular, con especial atención a aplicaciones concretas de estas técnicas.

Información adicional

Conocimientos básicos a nivel universitario de Biología, Medicina o disciplinas afines.

 
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Temario completo de este curso

INTRODUCCIÓN TEÓRICA NO PRESENCIAL:
- Conceptos básicos de Biología Celular e Inmunología.
- Antígenos y anticuerpos.
- Principios de inmunohistoquimica.
- Antígenos de superficie.
- Conceptos básicos de fluorescencia.
- El espectro.
- El fenómeno de la fluorescencia.
- Excitación y emisión.
- Los principios básicos de la citometría y la separación celular. Fluídica y electrónica (3 h).
- Flujo laminar, flujo turbulento. Microfluídica. Tiempo de vuelo. Side y forward scatter. Separación de gotas.
TEORÍA PRESENCIAL:
Tema 1. Principios de la citometría de flujo: fluidos, óptica y electrónica.
Tema 2. Fluorescencia, fuentes de luz, filtros, rangos de excitación y emisión. Proteínas fluorescentes y fluorocromos. Antígenos de superficie.
Tema 3. Calibración, manejo y ajuste del equipo. Compensación. Elección de controles. Análisis del ciclo celular, viabilidad y apoptosis.
Tema 4. Almacenamiento y análisis de datos, tipos de representación gráfica. Manejo del programa Summit 4.0. Análisis e interpretación de los resultados de las prácticas.
Tema 5. Fijación y permeabilización para estudio de antígenos intracitoplasmáticos.
Tema 6. Aplicaciones de la citometría de flujo en Biología (I). Estudio citométrico de activación de plaquetas.
Tema 7. Principios de la separación celular.
Tema 8. Aplicaciones de la citometría de flujo en Biología (II). Análisis de células madre mediante citometría de flujo.
Tema 9. Aplicaciones de la citometría de flujo en Biología (III). Citómica en el análisis dinámico de la función celular.
PRÁCTICAS PRESENCIALES:
1. Análisis de ciclo celular y de apoptosis.
2. Estudio de antígenos en membrana celular. Estudio poblaciones linfocitarias.
3. Detección de antígenos intracelulares.
4. Estudio de muestras de agua marina. Separación celular.
5. Ejercicios prácticos de análisis de datos citométricos.
6. Estudio de aplicaciones (I). Análisis por citometría de flujo de parámetros funcionales. Estrés oxidativo in vitro en biosensores bacterianos y en células eucarióticas.
7.Estudio de aplicaciónes (II). Análisis por citometría de flujo de parámetros funcionales. Actividad mitocondrial en células eucarióticas.
8. ANálisis de resultados obtenidos en las prácticas con el programa Summit
 

PRÁCTICAS NO PRESENCIALES:
9. Supuestos prácticos de análisis de resultados y resolución de problemas.
 

 
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